Ингаляция при кашле с физраствором: Можно ли делать ингаляции при кашле?

Ингаляции с физраствором при кашле у детей

Ингаляции — проверенный и надежный способ лечения простуженных детей. Вдыханием паров лечили многие болезни с древних времен. Для новорожденных это единственный безопасный терапевтический метод, который помогает вылечить надсадный кашель. Вдыхание паров и лекарственных средств дает отличный эффект при влажном кашле или плохом отхождении мокроты. Метод подойдет аллергикам, больным астмой малышам и грудным детям. В статье мы расскажем, как сделать ингаляцию и не навредить ребенку.

Ингаляции от кашля: особенности и противопоказания

Помогает ли ингаляция от сухого или влажного кашля? На этапах обострения применение данного метода способно ухудшить состояние больного ребенка. Врачи-педиатры назначают ингаляции с лекарственнымраствором в период долечивания.

Важно! На вопрос, можно ли делать ингаляции при температуре, медики отвечают отрицательно. На фоне гипертермии горячий пар только усугубит состояние и приведет к перегреванию и опасным цифрам на ртутном градуснике. Даже если органы ингалируются холодным паром, в организме начнутся интенсивные обменные процессы, что неизбежно приведет к повышению температуры тела.

Ингаляции с физраствором при влажном кашле у детей не рекомендуются еще в нескольких случаях:

• различные кровотечения. Если у вашего малыша наблюдаются носовые кровотечения, отделение мокроты с кровяными прожилками или плохая свертываемость крови, откажитесь от процедуры. Классические и аппаратные ингаляции расширяют сосуды. В случае внутренних повреждений заболевший малыш потеряет много крови;
• сердечно-сосудистые заболевания. Некоторые препараты, использующиеся в процессе ингаляции, расширяют сосуды для улучшения кровотока. Если у пациента слабые сосуды или есть нарушения в их работе, органы повреждаются, что приводит к дальнейшим осложнениям;
• аллергические реакции. Ингаляции небулайзером или паром не способны вызвать аллергии. Неприятные последствия в виде высыпания и других реакций спровоцированы лекарственными препаратами и различными растворами. Перед использованием лекарств проведите аллергологическую пробу и при необходимости откажитесь от непереносимых организмом препаратов.

Не смотря на безопасность, ингалирование слизистой оболочки и внутренних органов остается медицинской процедурой. Перед тем, как делать ингаляцию, проконсультируйтесь с терапевтом или педиатром.

Ингаляции с физраствором для маленьких детей при кашле: правила выполнения

Ингаляции с физраствором при сухом кашле имеют множество преимуществ. Главное достоинство процедуры — исключительно местное действие на организм ребенка. Препарат доставляется прямо к очагу поражения и не оказывает влияние на почки, сердце и другие внутренние органы. Благодаря этому средство имеет мало противопоказаний.

Если используется только натрия хлорид (данный состав часто называют физиологическим раствором), побочные эффекты отсутствуют практически полностью. Эффективность процедуры повышается при соблюдении базовых правил:

1. Проводите ингалирование через 1-2 часа после употребления пищи. Делайте это во второй половине дня — если процедура проведена перед сном, ребенок может перевозбудиться. Ингаляции, проведенные после пробуждения, могут вызвать гипертермию и другие побочные эффекты.
2. Рекомендуется применять только физраствор, отвары лекарственных трав и зарегистрированные медицинские препараты. Использовать при ингаляционной терапии масла не рекомендуется из-за возможных аллергических реакций. Составы на масляной основе оставляют на трубке ингалятора и прилагающейся к нему маске масляную пленку. Последнее портит работу прибора.
3. При использовании физиологического раствора и различных препаратов соблюдайте дозировку. Любой ингалятор или небулайзер включает в себя специальный контейнер с отметками. Он предназначен для того, чтобы контролировать дозу лекарства и не превышать ее.
4. Учитывайте продолжительность процедуры. Дышать паром можно не более 7-10 минут, для грудничков норма еще меньше и составляет 3 минуты.
5. Лечение заболеваний дыхательных путей должно быть комплексным. Если у ребенка насморк и боль в горле, чередуйте дыхание через рот и нос.

Уделяйте особое внимание чистоте ингалятора. После каждой процедуры его нужно промывать без использования щеток, обрабатывать антисептиком и помещать в детский стерилизатор. Хранить прибор рекомендуется в сухом месте, обернув салфеткой или полотенцем.

Ингаляции с применением физраствора при сухом кашле

Применение физраствора при сухом кашле у ребенка грудного возраста — самый щадящий, безопасный и эффективный метод. Делать ингаляции физраствором при кашле можно с 6-месячного возраста и при условии, что никаких других препаратов не используется. Чтобы ингаляции были удобными, в прибор входит маленькая маска, предназначенная специально для малышей. Взрослым использовать ее категорически не рекомендуется.

Важно! Ингаляции с физраствором при кашле у детей до года рекомендуется проводить с помощью особого прибора, который называется небулайзером. Это специальное устройство, которое размельчает лекарство на множество микроскопических капель, достигающих труднодоступных участков. Лекарство помещается в контейнер в небулайзере, подготавливается до нужного состояния и распыляется на воспаленный участок в виде аэрозоля.

Ингаляции при кашле небулайзером безопаснее и эффективнее таблеток для рассасывания. Они глубоко проникают в дыхательные пути и могут достигать даже бронхов и альвеол. Сколько дней можно делать ингаляции и как сделать процедуру максимально полезной? Ответы на эти вопросы читайте в инструкции ниже:

1. Соберите небулайзер, следуя приложенной инструкции. Подключите трубку к компрессору и маске, после чего осторожно приложите последнюю к лицу малыша.
2. Подготовьте физиологический раствор. Приобретите в аптеке стерильную соль (предпочтительнее морскую), чайную ложку компонента растворите в чистой горячей воде (200 мл), размешайте и остудите. Также можно использовать готовый физиологический раствор для ингаляции при сухом кашле небулайзером.
3. Поместите физраствор в контейнер для лекарства. Настройте нужный режим и запустите работу прибора.
4. Ингалятор не нужно использовать слишком долго. Делать ингаляции рекомендуется до 3-х минут. Дольше использовать физраствор для ингаляций не следует — лекарство уже достигло нужного эффекта.
5. Повторяйте процедуру до 2-х раз в день. Средняя продолжительность терапевтического курса — 5-10 дней.Делать ингаляции дольше этого времени не рекомендуется. Точный курс лечения уточняйте у врача-педиатра.

Сразу после процедуры не рекомендуется давать грудничку противокашлевые средства, подавляющие кашлевый рефлекс. При ингаляционной терапии происходит разжижение мокроты и выведение ее из организма. Небольшой влажный кашель является естественной реакцией на данную процедуру.

Препараты для ингаляции при кашле

Если ингаляции на основе физиологического раствора действуют медленно или дают недостаточно выраженный результат на 2-3 день, замените хлорид натрия на другие препараты:

• Беродуал. Это препарат, предназначенный специально для ингаляций небулайзером. Не подходит для детей до года. Назначается детям от 6 лет, но под строгим наблюдением лечащего врача. Средство назначается детям при кашле сухого или влажного типа, бронхите или астме. Можно сочетать с физиологическим раствором;
• Амбробене. Обладает муколитическим действием: разжижает слизистое отделяемое и выводит его из бронхов и легких. Можно давать ребенку до года — препарат безопасен для грудных детей и не оказывает побочных действий. Не рекомендуется совмещать с противокашлевыми лекарственными средствами. Препарат практически не имеет запаха;
• Атровент. Назначается при хроническом бронхите, обструкции легких и астме. Предупреждает спазм бронхов, оказывая выраженное бронхолитическое действие. Атровент не следует давать ребенку до 6 лет;
• Синупрет. Относится к гомеопатическим препаратам, изготовленным на основе лекарственных трав. Снимает отек слизистой оболочки верхних и нижних дыхательных путей. Укрепляет общий и местный иммунитет. Даётотличный эффект в сочетании с антибиотиками, усиливая их действие. Противопоказан малышам до 2-х лет;
• Мирамистин. Обладает бактерицидным действием, очищает слизистую оболочку от болезнетворных бактерий. Назначается при хроническом тонзиллите, фарингите, тонзиллите и других заболеваниях дыхательных путей. Препарат практически не имеет противопоказаний, поэтому родители грудных малышей часто пользуются этим средством, чтобы вылечить своего ребенка.

Препаратами и небулайзером нужно пользоваться по инструкции и регулярно — только в таком случае терапия даст ожидаемый эффект.

Похожие статьи

Реакция кашля на изокапническое гиперпноэ сухого воздуха и гипертонического раствора взаимосвязаны

Минна Пурокиви

¹ Отделение респираторной медицины Куопского университета. PO Box 1777, 70211 Куопио, Финляндия

Хейкки Коскела

¹ Отделение респираторной медицины, Университетская больница Куопио, P.O. Box 1777, 70211 Куопио, Финляндия

John D Brannan

² Отделение респираторной медицины и медицины сна, Больница Королевского принца Альфреда, Кампердаун, Новый Южный Уэльс, Австралия

Кирси Контра

³ Фармацевтический факультет Университета Куопио Госпиталь, Куопио, Финляндия

¹ Отделение респираторной медицины, Университетская больница Куопио, П.O. Box 1777, 70211 Куопио, Финляндия

² Отделение респираторной медицины и медицины сна, Больница Королевского принца Альфреда, Кампердаун, Новый Южный Уэльс, 2050, Австралия

³ Аптечный отдел, Университетская больница Куопио, Куопио, Финляндия

Поступило 23 ноября 2010 г .; Принято 14 октября 2011 г.

Abstract

Предпосылки

Механизмы астматического кашля в значительной степени неизвестны. Известно, что гиперосмолярные проблемы вызывают кашель у астматиков, но не у здоровых людей. Было высказано предположение, что изокапническое гиперпноэ сухого воздуха (IHDA) и гипертонические аэрозоли действуют посредством аналогичных механизмов при астме, вызывая сужение бронхов.Мы исследовали, существует ли связь между реакцией кашля, вызванной IHDA, и введением гипертонического раствора (HS).

Методы

Тридцать шесть астматиков и 14 здоровых субъектов вдыхали растворы HS с увеличивающейся осмолярностью, вводимые через ультразвуковой распылитель, до тех пор, пока не было зарегистрировано 15 кумулятивных случаев кашля. IHDA состоял из трех трехминутных этапов вентиляции: 30%, 60% и 100% от максимальной произвольной вентиляции с конечной точкой 30 кумулятивных кашлей. Испытания выполнялись в отдельные дни, по крайней мере, 48 часов между ними и в течение одной недели.Ингаляционный сальбутамол (400 мкг) вводили перед провокацией, чтобы предотвратить бронхоспазм. Реакцию на кашель выражали как отношение количества кашля к дозе (CDR), которое представляет собой общее количество кашлей, деленное на максимальную осмоляльность вдоха или максимальную достигнутую вентиляцию.

Результаты

Реакция на кашель на IHDA коррелировала с провокацией HS (Rs = 0,59, p <0,001). Реакция на кашель на IHDA была наиболее сильной в течение первой минуты после заражения. IHDA вызывал кашель чаще у астматиков, чем у здоровых субъектов. CDR составлял (среднее ± стандартное отклонение) 0.464 ± 0,514 и 0,011 ± 0,024 кашля / MVV%, p <0,001 соответственно. Сальбутамол эффективно предотвращает сужение бронхов при обеих проблемах.

Выводы

Больные астмой гиперчувствительны к провоцирующему кашель эффекту гиперпноэ, как и к гипертонусу. Реакция кашля, вызванная IHDA и HS, хорошо коррелировала, предполагая аналогичные механизмы, лежащие в основе ответов.

Введение

Хронический кашель — распространенная диагностическая и терапевтическая проблема, распространенность которой достигает 40% в популяции [1].Кашель может вызвать ухудшение качества жизни [2], и его экономическое бремя является значительным [3]. Это также самый частый симптом астмы [4]. Современные методы лечения астмы малоэффективны при кашле, и основное внимание в лечении уделяется патофизиологии, лежащей в основе заболевания. В недавнем консенсусном заявлении Европейского респираторного общества подчеркивается важность дальнейшего понимания механизмов кашля путем разработки валидных тестов для изучения кашля, а также выявления и оценки новых методов лечения его [5].

Было продемонстрировано, что астматический кашель может быть независимым от бронхиальной обструкции. Например, гипертонический раствор вызывает кашель у астматиков, которые предварительно получали ингаляционный сальбутамол, способный блокировать бронхоспазм [6]. В отличие от традиционных тестов провокации кашля капсаицином или лимонной кислотой [7-10], тесты провокации гипертонического кашля могут дифференцировать астматиков и здоровых людей [6]. Следовательно, гипертонический кашель, вызванный провокацией, может использоваться как для диагностики, так и для оценки реакции на лечение астмы при кашле [11-13].Эти результаты также подчеркивают потенциальную клиническую значимость применения гипертонического раствора (HS) для исследования кашля и оценки методов лечения кашля. Патологическая функция нейросенсорного аппарата может быть причиной как астматического, так и хронического кашля [6]. Однако точный механизм этого кашля до сих пор неясен.

Проблема изокапнического гиперпноэ сухого воздуха (IHDA), как полагают, вызывает сужение дыхательных путей аналогично физической нагрузке, вызывая сушку дыхательных путей и приводя к увеличению осмолярности жидкости, выстилающей дыхательные пути [14-16].Поэтому гиперпноэ от сухого воздуха можно рассматривать как физиологический раздражитель. Было высказано предположение, что вдыхание HS вызывает сужение бронхов посредством тех же механизмов, что и при тестировании с физической нагрузкой или гиперпноэ сухим воздухом [16]. Кроме того, известно, что вызванное HS увеличение осмолярности жидкости выстилки дыхательных путей является мощным стимулятором сенсорных нервов дыхательных путей и, следовательно, также кашля [3]. Таким образом, мы предполагаем, что реакции кашля на гипертонус и гиперпноэ имеют сходные механизмы. Для дальнейшего изучения этого предмета мы сравнили чувствительность кашля к HS и IHDA у астматиков и здоровых субъектов после предварительного лечения ингаляционным агонистом бета2.

Материалы и методы

Субъекты

Тридцать восемь субъектов с астмой были набраны и вошли в исследование в амбулаторной клинике университетской больницы Куопио. Все пациенты с астмой изначально были направлены в этот специализированный специализированный центр из-за неопределенности диагноза в первичной медико-санитарной помощи. Диагноз астмы был основан на анамнезе пациента и клиническом обследовании, позволяющем предположить наличие астмы, а также на объективных доказательствах обратимой обструкции дыхательных путей при спирометрии или амбулаторных измерениях пиковой скорости выдоха (PEF) в соответствии с рекомендациями GINA [17].Четырнадцать здоровых людей были отобраны из персонала университетской больницы Куопио. У здоровых испытуемых респираторных симптомов не было; однако атопия и курение в анамнезе не были критериями исключения. Критериями исключения для всех субъектов были фебрильная инфекция дыхательных путей в течение шести недель и ОФВ ₁ после приема сальбутамола менее 60% [18]. Кроме того, из исследования были исключены субъекты с чрезмерным спонтанным кашлем (> 10 кашлей в ответ на ингаляцию 0,9% физиологического раствора) и субъекты с падением ОФВ ₁ более чем на 10% во время ни одной из использованных ингаляционных провокаций [19,20] .Тридцать шесть астматиков и четырнадцать здоровых субъектов завершили исследование. Комитет по этике исследований, Больничный округ Северного Саво, Финляндия, одобрил это исследование (31.10.2008 117 // 2008), и все субъекты предоставили свое информированное согласие на участие в исследовании. Характеристики испытуемых представлены в таблице.

Таблица 1

Характеристики субъектов.

Протокол

Все пациенты с астмой наблюдались в течение однонедельного подготовительного периода, в течение которого они регистрировали пиковый поток выдоха (PEF) два раза в день, используя бронхолитические препараты только при необходимости. Ингаляционное заражение HS [6] и IHDA [21] проводилось в отдельные дни с по крайней мере 48 часами между провокациями в течение одной недели в одно и то же время дня. Кожные прик-тесты на общие аэроаллергены (Soluprick SQ ^® ; ALK-Abello, Hörsholm, Дания) и измерение оксида азота в выдыхаемом воздухе (eNO) (Sievers Model 280 NOA; Sievers Instruments Inc., Боулдер, Колорадо, США) были выполнены всем испытуемым при первом посещении.

Гипертонический солевой раствор

Использовался ультразвуковой распылитель (De Vilbiss Ultraneb 3000, Sunrise Medical Ltd, Лестер, Великобритания) с односторонним клапаном (Douglas Bag One-Way Air Valve, Harvard Apparatus, Холлистон, Массачусетс, США). доставить солевые растворы. Они были получены путем корректировки содержания хлорида натрия (Natrii Chloridium Ph. Eur., Tamro Ltd, Хельсинки, Финляндия) в стандартном фосфатно-солевом буфере, как подробно описано ранее [6].В начале испытания спирометрия была выполнена трижды (модель M9449, Medikro Ltd, Куопио, Финляндия), и был зарегистрирован самый большой FEV ₁ . Затем субъект сделал четыре ингаляции 100 мкг сальбутамола (Ventoline Evohaler, GlaxoSmithKline Ltd, Stockley Park West, Аксбридж, Миддлсекс, Великобритания), используя камеру Volumatic. Спирометрию повторили через 15 минут. После этого субъект вдыхал изотонический физиологический раствор с фосфатным буфером в течение 2 минут, используя приливное дыхание и надев зажим для носа.Кашель, возникающий во время ингаляции и через две минуты после него, вручную регистрировал медсестрой-исследователем, как описано ранее [22]. Впоследствии субъект аналогичным образом вдохнул растворы с осмолярностью 600, 900, 1200, 1500, 1800 и 2100 мОсм / кг. Насыщение кислородом (SaO ₂ ) контролировали с помощью пульсоксиметрии до и после сальбутамола, а также после каждой ингаляции физиологического раствора. Провокация прекращалась, если субъект просил об этом, регистрировалось 15 или более кумулятивных кашлей [6] или вводился окончательный раствор.Наконец, спирометрию повторили.

Изокапническое гиперпноэ при заражении сухим воздухом

Пробу выполняли, как описано ранее Rodwell et al. [21] с некоторыми изменениями. Вкратце, субъект вдохнул сухой сжатый воздух (Woikoski, Варкаус, Финляндия), содержащий 5% CO ₂ , который предотвращает алкалоз во время заражения. Используемый аппарат имел баллон-мишень (Direct Fillsingle Bag Set, Harvard Apparatus Ltd, Edenbridge, Kent, UK) на линии вдоха между ротаметром (Rotameter, Aalborg Instruments, Kytölä, Muurame, Финляндия) и мундштуком (Douglas Bag One -Way Air Valve and Mouthpiece, Harvard Apparatus Ltd, Эденбридж, Кент, Великобритания).При настройке газового потока использовался регулирующий клапан (Aga Gas Ltd, Lidingö, Sverige). Испытуемый вдохнул газ из воздушного шара-мишени. Субъекту было рекомендовано поддерживать постоянный размер целевого баллона с увеличением частоты и объема дыхания, когда поток воздуха к баллону увеличивался на различных этапах испытания. Задача началась с измерения исходного ОФВ ₁ . Затем субъект сделал четыре ингаляции 100 мкг сальбутамола (Ventoline Evohaler, GlaxoSmithKline Ltd, Stockley Park West, Uxbridge, Middlesex, UK), используя камеру Volumatic, и измерение FEV1 было повторено через 15 минут.Наилучший постсальбутамоловый ОФВ ₁ был использован для расчета максимальной произвольной вентиляции (MVV), принятой как 35 × постсальбутамоловый ОФВ ₁ . Испытание начиналось с дыхания при 30% MVV в течение трех минут. Медсестра-исследователь вручную подсчитывала количество кашля во время провокации и в течение 10 минут после нее [22]. Затем были выполнены два измерения FEV ₁ . Испытание продолжалось с вентиляцией при 60% MVV в течение трех минут и было успешным с помощью подсчета кашля и двух измерений FEV ₁ .Наконец, субъект вентилировался при 100% MVV в течение трех минут, и были повторены подсчет кашля и два измерения FEV ₁ . SaO ₂ контролировали с помощью пульсоксиметрии в начале испытания и после каждого шага. Провокация прекращалась, если субъект просил об этом, регистрировалось 30 или более кумулятивных кашлей или падение FEV ₁ составляло 10% или более по сравнению со значением после приема сальбутамола.

Статистический анализ

Тест Сафиро-Уилкинса использовался для проверки нормальности из-за размера выборки (n <50).Корреляцию между реакциями кашля, вызванными провокацией, определяли с помощью коэффициента ранговой корреляции Спирмена (Rs). Реакция кашля, количество кашлей как произведение количества стимула, выражалась как отношение количества кашля к дозе (CDR). При заражении HS CDR рассчитывали как совокупный кашель / конечную осмоляльность. При контрольном заражении IHDA CDR определяли как совокупный процент кашля / конечный MVV%. Различия в значениях CDR между группами оценивали с помощью U-критерия Манна-Уитни. Нормально распределенные значения сравнивали с t-критерием Стьюдента и t-критерием парных выборок.Значения выражаются в виде среднего и стандартного отклонения. Значение p <0,05 считалось статистически значимым. Все анализы проводились с использованием SPSS для Windows 15.0 (SPSS Inc. ™, Чикаго, США).

Результаты

Реакция кашля на IHDA хорошо коррелировала с реакцией кашля на гипертонический аэрозоль у пациентов с астмой с соотношением между кашлем и дозой Rs = 0,59, p <0,001 (рисунок). Кроме того, взаимосвязь сохранялась при сравнении кумулятивного кашля в конце приема физиологического раствора и испытаний IHDA с коэффициентом корреляции Спирмена, равным 0.46, р = 0,01.

Отношение кашля к дозе (CDR) изокапнического гиперпноэ провокации сухим воздухом по отношению к CDR ингаляции гипертонического солевого раствора у пациентов с астмой (n = 30) .

Реакция кашля на IHDA была наиболее сильной в течение первой минуты постгипервентиляционного периода, затем быстро прекратилась (рисунок). У некоторых субъектов кашель был продолжительным после раздражителя, и кашель наблюдался в течение всего периода после гипервентиляции. IHDA и HS были более эффективны при кашле у астматиков, чем у здоровых субъектов, p <0.001 (таблица). Кроме того, пациенты с астмой начинали кашлять при более низкой минутной вентиляции, чем здоровые (рисунок). Индексы кашля разделили астматиков и здоровых субъектов, но измерения eNO и FEV ₁ — нет (таблица).

Число спровоцированных кашлей (средние и стандартные ошибки) на каждой стадии всего изокапнического гиперпноэ проблем сухим воздухом у астматиков (n = 30) .

Суммарное количество кашлей относительно минутной вентиляции, вызванной изокапническим гиперпноэ или провокацией сухим воздухом, у каждого (а) здорового (n = 10) и (b) астматического (n = 30) субъекта .Горизонтальные линии около нуля или ниже указывают субъектов, которые совсем не кашляли.

Четверо субъектов из группы астматиков и один здоровый субъект не смогли достичь целевого значения MVV100% вентиляции на последнем этапе IHDA. Несмотря на это, у трех из упомянутых астматиков была реакция кашля между 29-34 кашлями, когда минимальной целью для прекращения было 30 кумулятивных кашлей, а здоровый субъект вообще не кашлял.

Не было статистически значимых различий в FEV ₁ между двумя испытаниями в любой из исследуемых групп.ОФВ ₁ (выраженный в% от прогнозируемого) у астматиков составлял 89,0 ± 2,31 до IHDA и 89,6 ± 2,25 до HS, и 91,1 ± 2,22 и 92,8 ± 2,55 у здоровых субъектов, соответственно. Соответственно, ОФВ ₁ после IHDA и HS составил 92,4 ± 2,08 и 92,7 ± 2,13 среди астматиков и 96,7 ± 2,28 и 97,6 ± 2,69 среди здоровых субъектов. Постсальбутамоловый ОФВ ₁ существенно не отличался от ОФВ ₁ в конце заражения ни в одном из тестов, ни в одной из групп: сальбутамол предотвращал падение ОФВ ₁ среди пациентов с астмой с уменьшением ОФВ ₁ только среднее (диапазон) 0.32% (-3,8% — + 5,1%) после HS и -0,9% (-6,7% — + 9,3%) после IHDA. Не было клинически значимого снижения SaO ₂ в связи с гиперпноэ с насыщением 97,4 ± 0,2% до и 97,1 ± 0,2% после заражения. То же самое наблюдалось для HS со средним значением SaO ₂ до и после контрольного заражения, равным 96,9 ± 0,2% и 97,1 ± 0,3%. Однако у двух астматиков было снижение> 4% SaO ₂ во время кашля в конце провокации HS, и это не было связано с каким-либо изменением FEV ₁ .

Обсуждение

Результаты этого исследования показывают, что пациенты с астмой с кашлевой реакцией на HS также имеют аналогичную реакцию кашля на IHDA. Кроме того, профиль реакции при кашле после IHDA аналогичен профилю HS в нашем предыдущем исследовании [6]. Кашель, вызванный IHDA, является наиболее сильным в течение первой минуты после заражения, после чего реакция на него быстро снижается. Эти результаты подтверждают нашу гипотезу о том, что механизм реакции на кашель у этих проблем одинаков.

Ранее было высказано предположение, что IHDA вызывает потерю воды из дыхательных путей аналогично физической нагрузке [14]. Это приводит к изменениям осмолярности жидкости, выстилающей дыхательные пути, а также, вероятно, эпителиальной клетки. Кроме того, было высказано предположение, что это основной механизм обструкции бронхов при гиперпноэ и астме, вызванной физической нагрузкой [23]. Несколько отчетов подтверждают эту гипотезу. Результаты Smith et al. показали, что обструкция бронхов вызвана вдыханием 4.5% физиологический раствор коррелировал с IHDA как по интенсивности, так и по началу действия [15]. Сходство ответов дыхательных путей на физическую нагрузку и гиперпноэ сухого воздуха [16] и вдыхание маннита [24] дополнительно подтверждает концепцию, что эти косвенные вызовы инициируют одинаковые патофизиологические реакции в дыхательных путях, вызывая сужение бронхов.

В этом исследовании, в дополнение к реакции кашля, сильно коррелирующей между проблемами HS и IHDA, мы обнаружили, что реакция на кашель была наивысшей в течение первой минуты после IHDA, имитируя предыдущие результаты после вдыхания HS [6].Пик кашлевой реакции появился раньше, чем наибольшее снижение ОФВ ₁ , о котором сообщалось в более ранних исследованиях, после провокации IHDA или HS, когда максимальный ответ дыхательных путей можно было ожидать через пять минут после отмены стимула [15,25]. Эти данные вместе предполагают, что механизм, лежащий в основе реакции на вызванный кашель после проблем с HS и IHDA, вероятно, будет схожим. В отличие от бронхоконстриктивного ответа на гипертонус и гиперпноэ, кашлевой ответ на эти стимулы, вероятно, не связан с высвобождением медиатора, происходящего из тучных клеток [26].Предполагаемая роль тучных клеток в бронхоконстриктивном ответе на гипертонус и гиперпноэ подчеркивается сильным ингибирующим действием агентов, стабилизирующих тучные клетки, на этот ответ [11,27,28]. Однако настоящее и наши предыдущие исследования демонстрируют, что эти препараты, то есть сальбутамол и недокромил, не влияют на реакцию кашля на эти стимулы [6,11].

Появление кашлевого ответа на IHDA и гипертонуса с задержкой, то есть после провокации, ранее рассматривалось как доказательство косвенной стимуляции рецепторов кашля через высвобождение медиатора [6].Однако Lavorini et al. недавно сообщили, что и упражнения, и изокапническое гиперпноэ от сухого воздуха могут снизить чувствительность кашлевого рефлекса [29]. Этот вывод важен и может фактически объяснить отсроченную реакцию кашля на IHDA и гипертонус, показанные в настоящем и нашем предыдущем исследовании [6].

Предыдущие исследования с использованием капсаицина для индукции кашля не смогли продемонстрировать какое-либо клиническое использование его для диагностики астмы или оценки реакции на лечение астматического кашля [8,9,30,31].Кроме того, введение капсаицина, по-видимому, не коррелирует с маннитом при оценке хронического кашля [32]. Известно, что капсаицин, а также лимонная и винная кислоты активируют сенсорные нервы дыхательных путей посредством стимуляции ваниллоидного рецептора 1 типа (TRPV 1). Напротив, HS, который является надежным активатором сенсорных нервов дыхательных путей, действует независимо от TRPV1 [3]. Настоящие результаты предполагают, что IHDA может действовать посредством того же механизма, что и HS, при индукции кашля. Маннит, другой гиперосмолярный стимул, также может использовать тот же путь [33].Однако необходимо понимание точного сенсорного нейронного механизма, ответственного за кашель, индуцированный HS и IHDA.

В данной статье представлен новый тип физиологического теста на провокацию кашля, IHDA, после предварительной обработки сальбутамолом. Можно критиковать использование разных конечных точек в задачах. Конечная точка из пятнадцати кашлей для провокации физиологическим раствором была определена ранее [6]. Тем не менее, конечная точка из тридцати случаев кашля для провокации IHDA была оценочной. Определение конечной точки требует исследования повторяемости.До сих пор не проводилось исследование повторяемости IHDA как провокации от кашля. В будущем точная конечная точка должна быть оценена также для кашля, вызванного IHDA. Не было клинически значимого снижения ОФВ ₁ или уровней насыщения кислородом во время любого из испытаний, использованных в этом исследовании. В настоящее время и HS, и IHDA кажутся физиологическими и безопасными для исследования кашля. Хотя кашель, вызванный провокацией, может доставлять пациенту дискомфорт, его можно выполнять безопасно, поскольку побочных эффектов не наблюдалось.

В заключение, реакция кашля на гипертонический раствор хорошо сравнима с чувствительностью кашля к действию стимулятора кашля, гиперпноэ от сухого воздуха. В этом отчете предполагается, что безопасность и практичность реакции кашля, вызванной HS и IHDA, можно использовать для исследования механизмов кашля.

Сокращения

В этой рукописи используются следующие сокращения: CDR: отношение кашля к дозе; eNO: оксид азота в выдыхаемом воздухе; FEV ₁ : объем форсированного выдоха за одну секунду; HS: гипертонический раствор; IHDA: изокапническое гиперпноэ сухого воздуха; MVV: максимальная произвольная вентиляция; PEF: максимальная скорость выдоха; SaO ₂ : насыщение кислородом.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Вклад авторов

М. П. принимал участие в планировании исследования, набирал субъектов, а также собирал и анализировал данные. На нее была возложена основная ответственность за написание рукописи. Х. К. принимал участие в планировании исследования, набирал испытуемых и принимал участие в процессе написания. J. B. принимал участие в процессе планирования и написания учебы.

К. К. принимал участие в планировании исследования, отвечал за производство гипертонических солевых растворов и контроль качества, а также принимал участие в процессе написания.Все авторы читали и одобрили окончательный вариант рукописи.

Благодарности

Авторы благодарят Raija Tukiainen, RN, за ее прекрасную помощь. Это исследование финансировалось университетской больницей Куопио.

Список литературы

• Морис А.Х., Кастелик Ю.А., Кашель 1. Хронический кашель у взрослых. Грудная клетка. 2003. 58 (10): 901–7. DOI: 10.1136 / thorax.58.10.901. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• French CL, Irwin RS, Curley FJ, Krikorian CJ.Влияние хронического кашля на качество жизни. Arch Intern Med. 1998. 158 (15): 1657–61. DOI: 10.1001 / archinte.158.15.1657. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Насра Дж., Белвиси М.Г. Модуляция сенсорной нервной функции и кашлевого рефлекса: понимание патогенеза болезни. Pharmacol Ther. 2009. 124 (3): 354–75. DOI: 10.1016 / j.pharmthera.2009.09.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Осман Л. М., Маккензи Л., Кэрнс Дж., Друг Дж. А., Godden DJ, Legge JS. и др. Оценка пациентом важности симптомов астмы.Грудная клетка. 2001. 56 (2): 138–42. DOI: 10.1136 / thorax.56.2.138. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Morice AH, Fontana GA, Belvisi MG, Birring SS, Chung KF, Dicpinigaitis PV. et al.ERS по оценке кашля. Eur Respir J. 2007; 29 (6): 1256–76. DOI: 10.1183 / 0_{36.00101006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]}
• Koskela HO, Purokivi MK, Kontra KM, Taivainen AH, Tukiainen HO. Гипертонический физиологический раствор для провокации кашля с предварительным лечением сальбутамолом: доказательства нейросенсорной дисфункции при астме.Clin Exp Allergy. 2008. 38 (7): 1100–7. DOI: 10.1111 / j.1365-2222.2008.02996.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Шмидт Д., Джоррес Р.А., Магнуссен Х. Пороги кашля, вызванные лимонной кислотой, у здоровых субъектов, пациентов с бронхиальной астмой и курильщиков. Eur J Med Res. 1997. 2 (9): 384–8. [PubMed] [Google Scholar]
• Ternesten-Hasseus E, Farbrot A, Lowhagen O, Millqvist E. Чувствительность к метахолину и капсаицину у пациентов с неясными респираторными симптомами. Аллергия. 2002. 57 (6): 501–7.DOI: 10.1034 / j.1398-9995.2002.23380.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Миногучи Х., Миногучи К., Танака А., Мацуо Х., Кихара Н., Адачи М. Чувствительность кашлевого рецептора к капсаицину не изменяется после бронхоспровокации аллергеном при аллергической астме. Грудная клетка. 2003. 58 (1): 19–22. DOI: 10.1136 / thorax.58.1.19. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Fujimura M, Nishizawa Y, Nishitsuji M, Nomura S, Abo M, Ogawa H. Предикторы типичного начала астмы при кашлевом варианте астмы.J Asthma. 2005. 42 (2): 107–11. DOI: 10,1081 / JAS-51336. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Koskela HO, Martens R, Brannan JD, Anderson SD, Leuppi J, Chan HK. Диссоциация действия недокромила на маннитол-индуцированный кашель или бронхоспазм у астматиков. Респирология. 2005. 10 (4): 442–8. DOI: 10.1111 / j.1440-1843.2005.00724.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Пурокиви М., Коскела Х., Койстинен Т., Магга Дж., Пеухкуринен К., Кивиниеми В. и др. Полезность гипертонической гистаминовой нагрузки в распознавании трудно диагностируемой астмы.Клинический респираторный журнал. 2007; 1 (2): 91–98. DOI: 10.1111 / j.1752-699X.2007.00016.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Пурокиви М., Коскела Х., Койстинен Т., Пеухкуринен К., Контра К.М. Оценка ответа на лечение ингаляционными кортикостероидами при астме с использованием кашля, вызванного гипертонической гистаминовой провокацией. Клинический респираторный журнал. 2010; 4: 67–73. DOI: 10.1111 / j.1752-699X.2009.00146.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Андерсон С.Д., Шеффель Р.Э., Фоллет Р., Перри С.П., Давискас Е., Кендалл М.Чувствительность к потере тепла и воды в покое и во время физических упражнений у пациентов с астмой. Eur J Respir Dis. 1982. 63 (5): 459–71. [PubMed] [Google Scholar]
• Смит К.М., Андерсон С.Д. Сравнение реакции дыхательных путей на изокапническую гипервентиляцию и гипертонический раствор у пациентов с астмой. Eur Respir J. 1989; 2 (1): 36–43. [PubMed] [Google Scholar]
• Смит К.М., Андерсон С.Д. Ингаляционная проба с использованием гипертонического раствора у астматиков: сравнение с реакцией на гиперпноэ, метахолин и воду.Eur Respir J. 1990; 3 (2): 144–51. [PubMed] [Google Scholar]
• GINA. Глобальная стратегия лечения и профилактики астмы. Глобальная инициатива по астме (GINA) http: //http//ginaasthma.org
• Sovijarvi AR, Malmberg LP, Reinikainen K, Rytila ​​P, Poppius H. Быстрый дозиметрический метод с контролируемым приливом для пробуждения гистамином. Повторяемость и распределение реактивности бронхов на клиническом материале. Грудь. 1993. 104 (1): 164–70. DOI: 10.1378 / сундук.104.1.164. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Koskela HO, Kontra KM, Purokivi MK, Randell JT.Расшифровка кашля, спровоцированного проблемами дыхательных путей. Грудь. 2005. 128 (5): 3329–35. DOI: 10.1378 / сундук.128.5.3329. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Андерсон С.Д., Аргирос Г.Дж., Магнуссен Х., Хольцер К. Провокация эукапническим произвольным гиперпноэ для выявления бронхоспазма, вызванного физической нагрузкой. Br J Sports Med. 2001. 35 (5): 344–7. DOI: 10.1136 / bjsm.35.5.344. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Rodwell LT, Anderson SD, du Toit J, Seale JP. Различные эффекты вдыхаемого амилорида и фуросемида на чувствительность дыхательных путей к сухому воздуху у пациентов, страдающих астмой.Eur Respir J. 1993; 6 (6): 855–61. [PubMed] [Google Scholar]
• Koskela HO, Purokivi MK, Tukiainen RM. Одновременный подсчет кашля в сравнении с видео при гипертоническом кашле. Кашель. 2008; 4: 8. DOI: 10.1186 / 1745-9974-4-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Андерсон С.Д., Давискас Э., Смит К.М. Астма, вызванная физическими упражнениями: разные мнения относительно стимула. Allergy Proc. 1989. 10 (3): 215–26. DOI: 10.2500 / 108854189778960054. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Браннан Дж. Д., Коскела Х., Андерсон С. Д., Чу Н.Чувствительность к манниту у астматиков с астмой, вызванной физической нагрузкой и гипервентиляцией. Am J Respir Crit Care Med. 1998. 158 (4): 1120–6. [PubMed] [Google Scholar]
• Гурвиц К.М., Аргирос Г.Дж., Роуч Д.М., Элиассон А.Х., Филлипс Ю.Ю. Интерпретация эвкапнической произвольной гипервентиляции в диагностике астмы. Грудь. 1995. 108 (5): 1240–5. DOI: 10.1378 / сундук.108.5.1240. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Браннан Дж. Д., Гулликссон М., Андерсон С. Д., Чу Н., Сил Дж. П., Кумлин М.Ингибирование высвобождения PGD2 тучными клетками защищает от сужения дыхательных путей, вызванного маннитом. Eur Respir J. 2006; 27 (5): 944–50. [PubMed] [Google Scholar]
• Браннан Дж. Д., Андерсон С. Д., Фрид Р., Леуппи Дж. Д., Коскела Г., Чан Г. К.. Недокромил натрия подавляет реакцию на вдыхаемый маннит у астматиков. Am J Respir Crit Care Med. 2000. 161 (6): 2096–9. [PubMed] [Google Scholar]
• Браннан Дж. Д., Андерсон С. Д., Гомес К., Кинг Дж. Г., Чан Г. К., Сил Дж. Фексофенадин снижает чувствительность, а монтелукаст улучшает восстановление после вдыхания маннита.Am J Respir Crit Care Med. 2001. 163 (6): 1420–145. [PubMed] [Google Scholar]
• Лаворини Ф., Фонтана Г.А., Челлини Э., Магни С., Дюранти Р., Виддикомб Дж. Десенсибилизация кашлевого рефлекса с помощью упражнений и произвольного изокапнического гиперпноэ. J Appl Physiol. 2010. 108 (5): 1061–8. [PubMed] [Google Scholar]
• Fujimura M, Hara J, Myou S. Изменение бронхиальной реактивности и чувствительности кашлевого рефлекса у пациентов с кашлевой астмой: эффект ингаляционных кортикостероидов. Кашель. 2005; 1: 5. DOI: 10.1186 / 1745-9974-1-5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Дикпинигайтис П.В., Альва Р.В. Безопасность тестирования капсаицина от кашля. Грудь. 2005. 128 (1): 196–202. DOI: 10.1378 / сундук.128.1.196. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Singapuri A, McKenna S, Brightling CE. Польза маннитола для оценки хронического кашля: пилотное исследование. Кашель. 2008; 4: 10. DOI: 10.1186 / 1745-9974-4-10. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Koskela HO, Hyvarinen L, Brannan JD, Chan HK, Anderson SD.Кашель во время провокации маннитом связан с астмой. Грудь. 2004. 125 (6): 1985–92. DOI: 10.1378 / сундук.125.6.1985. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
• Вильянен А.А., Халттунен П.К., Креус К.Е., Вильянен BC. Спирометрические исследования у некурящих, здоровых взрослых. Сканд Дж. Клин Лаб Инвест. 1992; 42: 5–20. [PubMed] [Google Scholar]

Лечение органов дыхания

Понимание того, как действуют эти лекарства и почему вы принимаете их в определенном порядке, поможет вам понять важность выбора времени.Поскольку лечение CF является индивидуальным, некоторым людям могут быть прописаны не все перечисленные лекарства, и в этом случае вы просто следуете порядку, исключая лекарства, которые вам не прописаны.

Шаг 1: Откройте дыхательные пути с помощью бронходилататора

(Пример: Альбутерол, ProAir, Вентолин, Провентил)
Бронходилататор расслабляет гладкую мускулатуру дыхательных путей, открывая их, обеспечивая лучший поток воздуха и облегчая очистку дыхательных путей.

Шаг 2: Увлажните дыхательные пути осмотическим агентом

(Пример: гипертонический солевой раствор)
Вдыхание 7% -ного гипертонического солевого раствора (HTS) помогает гидратировать густую слизь, облегчая ее движение.Поскольку HTS может вызвать бронхоспазм, рекомендуется всегда давать бронходилататор в первую очередь.

Шаг 3: Разжижайте слизь муколитиком

(Пример: Pulmozyme, Mucomyst)
Муколитики разжижают густую липкую слизь в легких. Когда слизь меньше липкой и липкой, ее легче мобилизовать, кашлять или выдыхать.

Шаг 4: Очистите слизь с помощью техники очистки дыхательных путей

(Пример: CPT, Vest, acapella, huffing, PEP)
После того, как дыхательные пути расслабились и стали более открытыми, а муколитик разжижил слизь, пришло время для техники очистки дыхательных путей (ACT).ACT поможет мобилизовать слизь из более мелких дыхательных путей в более крупные, где ее удалит кашель или раздражение. Обычно при МВ слизь в легких содержит миллионы бактерий, поэтому, чтобы избавиться от нее, как обычно, можно выполнять шаги 1,2,3 в таком порядке, пока вы находитесь в жилете или принимаете CPT

Обычно обработка жилета занимает 20-30 минут. Настройки вашего жилета, возможно, со временем придется отрегулировать, как и размер вашего жилета. Обычно мы начинаем подбирать жилетки детям примерно в возрасте 2 лет, и размер жилета часто меняется в зрелом возрасте.Большинство страховых компаний теперь без проблем покрывают жилеты для всех пациентов, и компании, занимающиеся жилетом, будут работать с вами с любыми вашими трудностями, включая ремонт, модернизацию и т. Д.

Шаг 5. Убейте бактерии вдыхаемым антибиотиком

(Пример: Tobi, Tobi podhaler, Colistin, Cayston)
После того, как очистка дыхательных путей и маневр кашля или грохота очистили ваши легкие от разрыхленной слизи, пришло время для вдыхания антибиотика, который помогает убить бактерии, оставшиеся в легких. .

Шаг 6. Уменьшите отек дыхательных путей с помощью противовоспалительного средства

Пример: Flovent, Advair)
CF дыхательные пути могут воспаляться из-за слизи и инфекции. Снизить отек помогут противовоспалительные препараты. Лучше всего принимать это в последнюю очередь после того, как будут приняты все другие лекарства. Всегда не забывайте полоскать рот после вдыхания стероидов.

Для получения более подробной информации о вышеуказанных лекарствах щелкните здесь.

Щелкните здесь, чтобы получить более подробные инструкции от CF Foundation по проведению дыхательных процедур с вашим младенцем или малышом

Щелкните здесь, чтобы получить инструкции по очистке небулайзера

Пожалуйста, задавайте команде CF любые вопросы, которые могут у вас возникнуть.

Руководство по индукции мокроты — Туберкулез

Это руководство следует читать вместе с директивами политики здравоохранения штата Новый Южный Уэльс PD2017_013 Политика предотвращения и контроля инфекций и PD2018_009 Профессиональная оценка, скрининг и вакцинация против определенных инфекционных заболеваний.

Введение

Индукция мокроты — это процедура, используемая для пациентов, у которых возникают проблемы с самопроизвольным отхождением мокроты. Пациент вдыхает небулайзерный гипертонический солевой раствор, который разжижает выделения из дыхательных путей, способствует кашлю и способствует откашливанию респираторных выделений. ^[1] Индукция мокроты проста и неинвазивна, и в случае успеха часто исключает необходимость в бронхоскопии. ^[2]

Процедура вызывает кашель, поэтому вполне вероятно, что инфекционные капли, если они есть, будут выброшены в воздух комнаты. При каждом выделении мокроты следует соблюдать строгие меры предосторожности при переносе респираторных заболеваний по воздуху.

Индикация

Индукция мокроты используется для диагностики туберкулеза легких (ТБ) у пациентов, которые не могут спонтанно откашливать адекватные образцы мокроты.Он также может быть полезен при диагностике милиарного туберкулеза и туберкулезного плеврального выпота

Противопоказания и меры предосторожности

1. Поскольку гипертонический раствор вызывает сужение бронхов, процедуру следует проводить только после предварительного приема сальбутамола и под наблюдением врача у пациентов с астмой, подозрением на астму или тяжелым нарушением функции легких (FEV ₁ <1 литр).
2. Поскольку процедура вызывает сильный кашель, процедура не должна выполняться пациентам, у которых сильный кашель может причинить вред.Сюда могут входить пациенты с:
   • кровохарканьем неизвестного происхождения
   • острый респираторный дистресс
   • Нестабильный сердечно-сосудистый статус (аритмии, стенокардия)
   • Аневризмы грудной, брюшной или церебральной области
   • гипоксия (SaO ₂ менее 90% в воздухе помещения)
   • Нарушение функции легких (ОФВ1 менее 1,0 литра)
   • пневмоторакс
   • тромбоэмболия легочной артерии
   • перелом ребер или другая травма грудной клетки
   • недавняя операция на глазах
   Относительные риски и преимущества процедуры следует обсудить с лечащей бригадой медиков и пациентом, прежде чем продолжить при наличии этих состояний.
3. Пациенты, которые не могут следовать инструкциям.

Инфекционный контроль

1. Индукция мокроты должна проводиться только в одном помещении с системой вентиляции, которая позволяет полностью выводить воздух из комнаты во внешнюю среду. В идеале эти помещения соответствуют австралийскому стандарту HB260-2003 для помещений с респираторной изоляцией (помещение типа 5), однако минимальное требование — это одноместная комната с закрытой дверью и выходом воздуха наружу без рециркуляции. ^[8]
2. Персонал, выполняющий эту процедуру, должен иметь задокументированную запись своего статуса туберкулиновой кожной пробы (ТКП) или иммуноанализа с выделением гамма-интерферона (IGRA).
3. Персонал должен использовать рекомендованные средства защиты органов дыхания ^[4] (маска P2), находясь в комнате, и одноразовые перчатки при работе с образцами мокроты (см. Директиву NSW о политике здравоохранения PD2007_036 Инфекционный контроль).
4. Дыхательный контур, используемый для отвода мокроты, должен иметь фильтр на стороне выдоха для уменьшения загрязнения окружающей среды.

Аккредитованный персонал

Эту процедуру должны выполнять только физиотерапевты и дипломированные медсестры, прошедшие обучение и аккредитацию в своем медицинском учреждении.

Подготовка к процедуре

Оценить пациента

Обследуйте пациента на наличие астмы или любого другого состояния, перечисленного в разделе «Противопоказания и меры предосторожности» выше.

Объяснить процедуру пациенту

Перед процедурой пациенту необходимо объяснить следующие моменты:

• цель процедуры
• когда будут доступны результаты
• как уведомить сотрудника, если требуется помощь и когда процедура завершена
• физиологический раствор будет соленым на вкус
• как пользоваться небулайзером
• потребность в дыхании ртом во время теста
• Потребность в глубоком вдохе с последующим выдохом и кашлем
• Пациенту следует прополоскать рот и полоскать горло водой (для предотвращения загрязнения образца)
• Пациент должен сесть прямо, поместить мундштук в рот пациента (надеть зажим для носа) и включить небулайзер
• Пациенту следует рекомендовать сдать образец мокроты от глубокого кашля
• Важность пребывания в комнате до прекращения кашля
• важность надевания хирургической маски перед выходом из комнаты.

Процедура

1. Перед тем, как доставить пациента в зону, в которой будет проводиться отбор мокроты (см. Приложение 1), соберите и проверьте оборудование (см. Приложение 2).
2. Заполните камеру небулайзера водой до отметки между «линией минимального заполнения» и «линией максимального заполнения».
3. Поместите чашу небулайзера в небулайзерную камеру и убедитесь, что выпуклое основание находится в воде.
4. Загрузите 20 мл 3% гипертонического солевого раствора.
5. Введите гипертонический раствор в небулайзерную камеру.
6. Подсоедините узел к небулайзерной машине.
7. Попросите пациента тщательно очистить полость рта зубной щеткой, если это не было сделано после еды, или сильное полоскание и повторное полоскание водопроводной водой до тех пор, пока возвращенная жидкость не освободится от мусора.
8. Отнесите пациента в комнату отрицательного давления. Удобно усадите их в вертикальное положение.
9. Объясните пациенту процедуру и возможные побочные эффекты (напр.g., кашель, сухость во рту, стеснение в груди, тошнота и повышенное слюноотделение) ^[1]
10. Попросите пациента:
    • вдыхать и выдыхать только через мундштук
    • отхаркивает слюну в чаше рвоты
    • отхаркивающая мокрота откашлялась в стерильную банку.
11. Объясните, что лицо, выполняющее процедуру, должно носить противотуберкулезное устройство защиты органов дыхания (маску P2) и надевать его.
12. Закройте все двери и окна и повесьте табличку «Не входить: индуцированная мокрота в процессе» на внешней стороне двери.
13. Включите машину (над уровнем гипертонических растворов должен появиться тонкий туман).
14. Поместите мундштук в рот пациента, усилив дыхание ртом (теперь тонкий туман должен быть виден через прозрачный тройник на вдохе, и пациент должен почувствовать соленый привкус во рту).
    Примечание: Возможные проблемы при сборке оборудования, которые могут снизить эффективность индуцированной мокроты, включают:
    • один из двух односторонних клапанов в системе может быть установлен неправильно.
    • , возможно, в камере небулайзера недостаточно / слишком много воды.
    • может не хватить 3% -го гипертонического раствора в чашке небулайзера.
15. Дайте пациенту вдохнуть гипертонический туман в течение примерно 5 минут. Затем попросите его сделать несколько глубоких вдохов через небулайзер. Если у пациента не возникает спонтанного кашля, попросите его попробовать принудительный кашель.
16. Человек, выполняющий процедуру, может использовать щадящую физиотерапию грудной клетки. E.g., вибрация и перкуссия для выделения мокроты.
17. Пациент должен постоянно находиться под пристальным наблюдением во время процедуры:
    • внимательно следить за пациентом на предмет признаков респираторной недостаточности.
    • в двери должно быть предусмотрено смотровое окно для наблюдения за пациентом извне.
    • , если пациенту требуется помощь, медицинский работник должен надеть противотуберкулезное устройство защиты органов дыхания (маска P2) перед входом в комнату и снять его после выхода из комнаты.
18. Процедуру следует прекратить, когда:
    • у пациента выделено 1-2 мл мокроты на каждый образец
    • Достигнуто 15 минут распыления
    • Больной жалуется на одышку, стеснение в груди или хрипы.
19. Прекратите процедуру, если через 15 минут она не принесла результатов, или если у пациента появляются признаки респираторной недостаточности, головокружение или тошнота.
20. Поместите идентификационную наклейку пациента на контейнер для образцов; напишите на наклейке время и дату проведения процедуры.
21. Оцените состояние пациента после процедуры и при необходимости примите соответствующие меры.
22. Снимите небулайзерную камеру и металлический экран с устройства. Промойте и высушите водой и бумажным полотенцем.
23. Протрите распылитель метилированным спиртом.
24. Отправьте образец в отделение патологии.

Документация

Задокументируйте процедуру и все важные детали в записях о прогрессе пациента и в плане сестринского ухода.Как только результат станет доступен, зафиксируйте это как в медицинских записях, так и в листе результатов в передней части прикроватных таблиц для стационарных пациентов или в медицинских записях только для амбулаторных пациентов.

Следуя процедуре

Повесьте табличку на двери, указывающую, когда в комнату можно будет безопасно войти

После процедуры должно быть отведено достаточное время для удаления не менее 99% загрязняющих веществ, переносимых по воздуху. Этот период времени может быть разным; в зависимости от количества воздуха, выходящего из помещения, смешивания воздуха в помещении и размера помещения (см. таблицу 1).

Таблица 1 — Воздухообмен в час (ACH) и время, необходимое для эффективности удаления 99,9% переносимых по воздуху загрязнителей ^[7] *

* Эта таблица может использоваться для оценки времени, необходимого для очистки воздуха от переносимых по воздуху Mycobacterium tuberculosis после того, как пациент покинет территорию или после завершения процедур по производству аэрозолей.

Приложение 1: Помещения для отведения мокроты

Помещение с отрицательным давлением следует использовать для отведения мокроты, чтобы предотвратить утечку инфекционных частиц в другие помещения учреждения. Воздух в помещениях, используемых для отвода мокроты, не следует рециркулировать, если только он не проходит через хорошо обслуживаемый блок фильтрации HEPA. Воздух должен выходить наружу, а внешние вентиляционные отверстия не должны находиться в непосредственной близости от других зон пациента (т.е. размещение вентиляционных отверстий необходимо делать с учетом воздействия на население больницы).

Комната типа 5 (респираторная изоляция) — Австралийский стандарт HB 260–2003

Помещения типа 5 (респираторная изоляция) — это помещения, которые подходят для изоляции пациентов с инфекциями, передаваемыми воздушно-капельным путем, и спроектированы таким образом, чтобы свести к минимуму возможность передачи этих инфекций другим пациентам или персоналу. Входящие в комнату лица должны использовать соответствующие средства индивидуальной защиты.

Помещение типа 5 (респираторная изоляция) будет состоять из одноместного помещения с ванной комнатой, но спроектировано таким образом, чтобы внутри помещения можно было создать отрицательное давление по отношению к коридору без утечки или с минимальной утечкой воздух в коридор.

С учетом имеющихся в настоящее время технологий и инженерных практик это означает, что обычно требуется прихожая. Прихожую нельзя делить между комнатами. Прихожая не обязательно должна работать как воздушный шлюз. Воздух из помещения не должен рециркулировать в другие помещения на предприятии (если не используется фильтр HEPA).

Скорость воздухообмена должна быть больше или равна двенадцати скоростям воздухообмена в час с минимум двумя воздухообменами в час наружного воздуха, в зависимости от того, что приведет к большему количеству воздуха, должно быть достигнуто, когда фильтры достигли своего максимального падения давления . ^[8]

Расположение комнат для отведения мокроты

Помещения для промывания мокроты и местные вытяжные устройства следует размещать рядом с помещениями для ухода за пациентами, где персонал может контролировать пациентов и оказывать им помощь по мере необходимости. Помещение должно быть расположено вдали от залов ожидания и других зон, куда могут войти пациенты или посетители, которые могут подвергнуться риску заражения.

Воздух, выходящий наружу из комнат для отведения мокроты

Воздух из помещений респираторной изоляции не должен попадать в другие системы вентиляции.Воздух из этих помещений следует выводить прямо за пределы здания. Точки сброса должны располагаться как можно дальше от воздухозаборников, животных и людей. В качестве альтернативы, если внешний отвод невозможен, рециркулируемый воздух следует направлять через фильтры HEPA.

Обслуживание устройств для промывки мокроты и помещений с HEPA-фильтрами

Техническое обслуживание помещений, используемых для отвода мокроты, включает осмотр и замену предварительных фильтров и финальных HEPA-фильтров.Многие из этих устройств оснащены фильтрометрами, которые показывают, когда фильтры загрязнены и нуждаются в замене. Предварительные фильтры (используемые для продления срока службы HEPA-фильтров) необходимо менять чаще, чем окончательные HEPA-фильтры. Фильтры следует заменять и утилизировать в соответствии с местными требованиями.

Рекомендации по плановому техническому обслуживанию могут различаться в зависимости от производителя. Должен быть назначен штатный сотрудник или инженер учреждения для наблюдения за техническим обслуживанием устройства для введения мокроты.Этот человек должен быть обучен основным принципам работы устройства, включая рекомендуемые периодические проверки.

Приложение 2: Оборудование

• Рекомендуемая маска для лица P2 ^{[4], [5]} (для медицинского работника)
• Генератор аэрозолей / ультразвуковой небулайзер
• Гофрированная аэрозольная трубка (предпочтительно одноразовая)
• Односторонний клапан (ы) и фильтр
• Загубник (предпочтительно одноразовый)
• Раствор гипертонический солевой
• Одноразовые перчатки
• Стакан с водой и бумажные салфетки
• Чаша для рвоты
• Прозрачный пластиковый пакет для образцов на молнии с этикеткой биологической опасности
• Стерильный контейнер для мокроты с указанием данных пациента
• Заполненная форма запроса на лабораторию с указанием данных о пациенте
• Хирургическая маска ^{[6], [7]} (для пациента при выходе из комнаты)
• Знак с указанием: «Вызванная мокрота в процессе — не вводить»
• 1 x Т — штука
• 1 x небулайзерная камера
• 1 x Крышка небулайзера
• Шприц 1 x 20 мл
• Игла калибра 1 x 19
• 1 контейнер для острых предметов

Аварийное оборудование

• Настенный или баллонный кислород
• Кислородная маска Hudson
• кислородная трубка 1 метр
• Вентолин / Атровент и небулайзер или спейсер

Ссылки

1. Робинсон, Б. Политика, протоколы и процедуры выделения мокроты для диагностики респираторных инфекций . Больница Джона Хантера, сентябрь 1997 г.
2. Decker, C. F. и Masur, H. Pneumocystis and Other Protozoa. СПИД: биология, диагностика, лечение и профилактика (четвертое издание). Издательство Липпинкотт-Рэйвен. Нью-Йорк, 1997.
3. Международный противотуберкулезный центр Карри. Контроль за туберкулезной инфекцией: Практическое руководство по профилактике туберкулеза.
4. Стандарты Австралийский международный AS / NZS 1716- Устройства защиты органов дыхания
5. NSW Health PD 2007_036 Политика инфекционного контроля.Департамент здравоохранения штата Новый Южный Уэльс. Северный Сидней.
6. Комитет по консультативному контролю практики инфекционного контроля в больницах, 2004 г., Руководство по мерам предосторожности при изоляции: предотвращение передачи инфекционных агентов в медицинских учреждениях . Консультативный комитет по практике инфекционного контроля в здравоохранении.
7. Центры по контролю и профилактике заболеваний, 2005 г., Руководство по профилактике передачи микобактерий туберкулеза в медицинских учреждениях .
8. Standards Australia International HB 260-2003 Инфекции, приобретенные в больницах — снижение риска

Re: Пациентам с положительным результатом на SARS-COV-2 лечения небулайзером следует избегать

Уважаемый редактор

Недавнее исследование оценило стабильность SARS-CoV-2 и SARS-CoV-1 в аэрозолях и на различных поверхностях и оценило скорость их распада. Оба вируса оставались жизнеспособными в аэрозолях на протяжении всего эксперимента (3 часа) со снижением инфекционного титра с 103.От 5 до 102,7 TCID50 на литр воздуха (1).

В Италии, поскольку COVID-19 перегрузил систему здравоохранения по всей северной Италии, пациенты с легким заболеванием остаются дома, где лекарства с помощью небулайзера часто назначаются самостоятельно, физиологический раствор, муколитики, бронходилататоры, ингаляционные стероиды и другие препараты для облегчения состояния. кашель. К сожалению, во время распыления богатые вирусами частицы испускаются пациентом во время выдоха, кашля, чихания и разговора и могут часами оставаться жизнеспособными в аэрозолях в палате пациента, подвергая членов семьи и / или сожителей заражению SARS-COV-2.

Как указано в недавнем документе COVID-19: Руководство по профилактике инфекций и контролю за ними в медицинских учреждениях (1), «во время распыления аэрозоль поступает из источника, не относящегося к пациенту (жидкость в камере распылителя), и не несет вирусные частицы. Если частица в аэрозоле сливается с загрязненной слизистой оболочкой, она перестанет переноситься по воздуху и, следовательно, не будет частью аэрозоля ». К сожалению, не все частицы слипаются на поверхности слизистых оболочек, и многие из них выводятся наружу во время выдоха, кашля, чихания и разговора.Эти частицы были в тесном контакте с вирусом и потенциально заразны. Если SARS-COV-2 может оставаться жизнеспособным в аэрозолях не менее 3 часов (1), лечение небулайзером инфицированного пациента может привести к распространению Covid-19. Следовательно, этого следует избегать с положительными людьми SARS-COV-2 в домашних условиях. Небулайзер следует использовать только в четко определенных ситуациях, потому что нынешняя пандемия случаев COVID-19 требует более строгих мер инфекционного контроля (3). Наконец, такой же риск может представлять вдыхание пара.

1) Н. ван Дормален, Ph.D. Т. Бушмейкер, Д. Х. Моррис, М. Г. Холбрук, А. Гэмбл, Б.Н. Уильямсон, А. Тамин, Дж. Л. Ааркорт, Н. Дж. Торнбург, С. И. Гербер, Дж. Ллойд-Смит, Э. де Вит, В. Дж. Манстер, Аэрозольная и поверхностная стабильность SARS-CoV-2 по сравнению с SARS-CoV-1. NEJM. 17 марта 2020 г. DOI: 10.1056 / NEJMc2004973.
2) COVID-19. Руководство по профилактике инфекций и контролю за ними в медицинских учреждениях Адаптировано из публикации Pandemic Influenza: Guidance for Infection Prevention and Control in Healthcare Settings 2020.Выпущено совместно Министерством здравоохранения и социального обеспечения (DHSC), Общественным здравоохранением Уэльса (PHW), Агентством общественного здравоохранения (PHA) Северной Ирландии, Здравоохранением Шотландии (HPS) и Общественным здравоохранением Англии в качестве официального руководства. https: //assets.publishing.service.gov.uk/government/uploads/system/uploa … По состоянию на 20 марта 2020 г.
3) I. Amirav, M.T. Новый дом. RE: Передача вируса короны через небулайзер — серьезный, недооцененный риск! CMAJ. 3 марта 2020 г. https://www.cmaj.ca/content/re-transmission-corona-virus-nebulizer-serio…

Гипертонический физиологический раствор при муковисцидозе

Гипертонический физиологический раствор — это разжижающий слизь агент, который часто назначают пациентам с муковисцидозом (МВ). Это раствор хлорида натрия (поваренная соль) в концентрациях, превышающих физиологические. (В крови и тканях концентрация соли составляет около 0,9 процента).

Гипертонический раствор, доступный в нескольких концентрациях, пациенты с МВ принимают в виде тумана с помощью небулайзера, обычно несколько раз в день.

Как гипертонический раствор помогает пациентам с МВ

CF — хроническое наследственное заболевание, вызванное мутациями в гене CFTR , который кодирует белок, который направляет соль через клеточные мембраны. Мутации в гене приводят к тому, что белок CFTR не функционирует должным образом и приводит к тому, что соль не поступает нормально. Это, в свою очередь, вызывает скопление густой липкой слизи в различных органах и тканях. В легких эта слизь вызывает затруднение дыхания и затрудняет дыхание, что делает пациентов более восприимчивыми к инфекциям.

Гипертонический солевой раствор вытягивает воду из эпителиальной ткани посредством осмоса, разжижая слизь и облегчая откашливание. Заряженные частицы раствора также могут помочь разрушить слизь и предотвратить распространение инфекций в легких.

Гипертонический раствор в клинических испытаниях для CF

Обзорная статья, опубликованная в Кокрановской базе данных систематических обзоров , посвящена результатам 19 клинических исследований, оценивающих гипертонический раствор в качестве терапии CF.Всего в исследованиях приняли участие 966 пациентов в возрасте от 4 месяцев до 64 лет.

Он пришел к выводу, что регулярное использование гипертонического раствора пациентами с МВ старше 12 лет приводит к небольшому улучшению функции легких через четыре недели, что измеряется объемом форсированного выдоха за 1 секунду (ОФВ1 или объем воздуха, который пациент может выдохнуть за 1 секунду). второй). Однако это улучшение было очень незначительным и не было заметно на более поздних этапах исследований.

Обзор также показал, что гипертонический раствор снижает частоту обострений легких (тяжелых инфекций легких, снижающих емкость легких) у пациентов старше 6 лет и может улучшить качество жизни.

Другая информация

Поскольку гипертонический раствор представляет собой простой солевой раствор, многие пациенты склонны готовить его самостоятельно, но это не рекомендуется, поскольку раствор не будет стерильным и может стать источником легочных инфекций.

Многие пациенты испытывают кашель, стеснение в груди и боль в горле после введения гипертонического раствора.

***

Муковисцидоз Новости Сегодня — это строго новостной и информационный веб-сайт об этом заболевании.Он не предоставляет медицинских консультаций, диагностики или лечения. Этот контент не предназначен для замены профессиональных медицинских консультаций, диагностики или лечения. Всегда обращайтесь за советом к своему врачу или другому квалифицированному поставщику медицинских услуг с любыми вопросами, которые могут у вас возникнуть относительно состояния здоровья. Никогда не пренебрегайте профессиональным медицинским советом и не откладывайте его обращение из-за того, что вы прочитали на этом веб-сайте.

Они полезны или вредны?

Выберите автора: Аарон Барбер, AT, ATC, PESAbbie Roth, MWC, Адам Остендорф, MD, Адриан Бейлис, PhD, CCC-SLP, Adrienne M.Flood, CPNP-AC Advanced Healthcare Provider Council, Aila Co, MDAlaina White, AT, ATCAlana Milton, MDAlana Milton, MDAlecia Jayne, AuDAlessandra Gasior, DOAlex Kemper, MD, Александра Фанк, PharmD, DABATA ДеПойЭллисон Роуленд, AT, ATCAllison Strouse, MS, AT, ATCAmanda E. Graf, MDAmanda Smith, RN, BSN, CPNAmanda Sonk, LMTAmanda Whitaker, MDAmber Patterson, MDAmberle Prater, PhD, LPCCAmy Coleman, LISWAmy E. , MScAmy Fanning, PT, DPTAmy Garee, CPNP-PCAmy Hahn, PhDAmy HessAmy Leber, PhDAmy LeRoy, CCLSAmy Moffett, CPNP-PCAmy Randall-McSorley, MMC, EdD Candidate, Анастасия Фишер, MD, FACSMAndrea-HardyBoerger, MEd, CCC-SLPЭндрю АксельсонЭндрю Крогер, MD, MPHA Эндрю Швадерер, Анджела Абенайм, Анджела Биллингсли, LISW-SAnn Pakalnis, MD Анна Лиллис, MD, PhDAnnette Haban-BartzAnnie Drapeau, MDAnnie Temple, MS MDAri Rabkin, PhDAriana Hoet, PhDArielle Sheftall, PhDArleen Karczewski, Ashleigh Kussman, MDAshley Eckstein, Ashley Kroon Van Diest LISW-SAshley Tuisku, CTRSAsuncion Mejias, MD, PhDAurelia Wood, MD Бейли Янг, DOBecky Corbitt, RNBelinda Mills, MD Бенджамин Филдс, PhD, MEdBenjamin Kopp, MDBernadette Burke, AT, ATC, MSBethlDD, RNBethl Доктор медицины Бетани Уокер, доктор философии Бхувана Сетти, доктор медицинских наук Билл Кулджу, магистр медицины, АТ Блейк Скиннер, Бонни Гурли, MSW, LSW, Брэд Чайлдерс, RRT, BS Брэнди Когдилл, RN, BSN, CFRN, ​​EMT-PBrandon MorganBreanne L.Бауэрс, PT, DPT, CHT, CFST Брендан Бойл, MD, MPH Брайан Бо, MD Брайан К. Каспар, доктор философии Брайан Келлог, MD Бриана Кроу, PT, DPT, OCS Агри Торунер, доктор медицинских наук, Кейтлин Талли, Калеб Мосли, Каллиста Дамман, Ками Винкельспехт, доктор медицинских наук, Кэнис Креран, доктор медицинских наук, доктор Карл Х. Бэкес, доктор медицинских наук, Карло Ди Лоренцо, доктор медицинских наук, Карол Баумхардт, доктор медицинских наук, Карло Ди Лоренцо, доктор медицинских наук, Карол Баумхард, доктор медицинских наук, Кейси Коттрилл, доктор медицинских наук, Би-би-си Нэбассин, Нэбассин, Нэбассин, Нэбассин, Нэнблкен PhDCharae Keys, MSW, LISW-SC, Чарльз Элмараги, MD Челси Достер, BSC, Шерил Буп, MS, OTR / L, Шерил Г.Бакстер, CPNPШерил Гариепи, MDChet Kaczor, PharmD, MBAHris Smith, RNChristina Ching, MDChristina DayChristine Johnson, MA, CCC-SLPChristine Mansfield, PT, DPT, OCS, MDChristine PrusaChristopher Goettee, PTSC, DPC PT, DPT, OCS, NASM-PESCody Hostutler, PhDConnor McDanel, MSW, LSWCorey Rood, MDCorinne Syfers, CCLSCourtney Bishop. PA-CC Кортни Холл, CPNP-PC, Кортни Портер, RN, MSCrystal Milner, Курт Дэниелс, доктор медицины Синтия Холланд-Холл, доктор медицинских наук, MPHDana Lenobel, FNP, Дана Ноффсингер, CPNP-AC, Дейн Снайдер, MD Дэниел Кури, MD Дэниел Пи Джуста, MD Дэниел, Дэниел Wessells, PT, MHAD, Дэвид Аксельсон, MD Дэвид Стукус, MD Дин Ли, MD, PhD Дебби Терри, NPDeborah Hill, LSWDeborah Zerkle, LMTDeena Chisolm, PhDDeipanjan NandiDS, MDDenisomanll, MDDennisham, MDDennisham, MDDenisomin, D.Уильямс, доктор медицины, магистр здравоохранения, FAAP, дипломированный специалистDonna TeachDoug WolfДуглас Маклафлин, MDDrew Duerson, MDEd MinerEdward Oberle, MD, RhMSUSEdward Shepherd, MDEileen Chaves, PhDElise Berlan, MDElise DawkinsElizabeth A. Cannon, LPCC , MT-BCE Эмили А. Стюарт, доктор медицинских наук, Эмили Декер, доктор медицинских наук, Эмили Гетчман, Эмма Высоцки, PharmD, RDNEric Butter, PhDEric Leighton, AT, ATCEric Sribnick, MD, PhDErica Domrose, RD, LDEricca L Lovegrove, RDErika Roberts, Эрин Гейтс, М.Ed., CSCSErin Shann, BSN, RNErin TebbenFarah W. Brink, MDGail Bagwell, DNP, APRN, CNSGail Besner, MDGail Swisher, ATGarey Noritz, MDGary A. Smith, MD, DrPHGeri Hewitt, MDGina Hounam, PhDGina Mcregotory Paul Д. Пирсон, MDGriffin Stout, MDGuliz Erdem, MDHailey Blosser, MA, CCC-SLPHanna MathessHeather Battles, MDHeather ClarkHeather Yardley, PhD, Генри Спиллер, Генри Сян, MD, MPH, PhDHerman Hundley, MS, ATH, MDH, DHerman Hundley, MS, ATH, MD, CSC MPH, MSHoward Jacobs, MDHunter Wernick, DOIbrahim Khansa, MDIhuoma Eneli, MDIlana Moss, PhDIlene Crabtree, PTIrene Michael, MDIrina Buhimschi, MDIvor Hill, MDJackie Cronau, BC, CWOCNJacqueline-DJ, PhacquelineD WynnD, PhDJacquelineD WynnD, PhDJacqueline-DJ Доктор медицины Джеймс Мураками, доктор медицины Джеймс Попп, доктор медицины Джеймс Руда, доктор медицины Джеймсон Маттингли, доктор медицины Джейми Маклин, доктор медицины Джейн Абель, Янель Хюфнер, Массачусетс, CCC-SLP, Дженис М.Moreland, CPNP-PC, DNP, Дженис Таунсенд, DDS, MSJared Sylvester, Jaysson EicholtzJean Hruschak, MA, CCC / SLPJeff Sydes, CSCSJeffery Auletta, MDJeffrey Bennett, MD, PhDJeffrey Hoffman, MDJeffrey Phord, MDJeffrey Phord, MDJeffrey Phord, MDJeffrey Phord, MDJeffrey Phord, MDJeffrey Phord, MDJeffrey Phord , DPTJennifer HofherrJennifer LockerJennifer PrinzJennifer Reese, PsyDJennifer Smith, MS, RD, CSP, LD, LMTJenny Worthington, PT, DPT, DPTJerry R. Mendell, MDJessalyn Mayer, MSOT, BC / LJessica Bailey, BogDJessica, MSOT Bullock, MA / CCC-SLP Джессика Бушманн, RD Джессика Шерр, PhD Джим О’Ши OT, MOT, CHT Джоан Фрейзер, MSW, LISW-S, Джон Акерман, PhD, Джон Кабальеро, PT, DPT, CSCS, Джон Ковальчин, MD, Джонатан Д.Теккерей, доктор медицинских наук, Джонатан Финлей, магистр медицины, ведущий бакалавриат, магистр права, доктор медицинских наук, Джонатан М. Гришкан, доктор медицинских наук, Джонатан Наполитано, доктор медицинских наук, Джошуа Уотсон, доктор медицинских наук, Джули Эйнг, CRA, RT (R) Джулия Колман, MOT, OTR / L , Доктор медицинских наук, Кэди Лейси, Кейли Хейг, Массачусетс, MT-BC, Кейли Матесик, Камила Тваймон, LPCC-SKara Malone, MDKara Miller, OTR / LKaren Allen, MDKaren Days, MBAKaren Rachuba, RD, LD, CLCKari A. Meeks, OTKari Dubro, MS, RD, LD, CWWSKari Phang, MDKarla Vaz, MDKaryn L. Kassis, MD, MPHKasey Strothman, MDKatherine Deans, MDKatherine McCracken, MDKathleen (Katie) RoushKathryn Blocher, CPNP-PCKathryn J.Джунге, Р.Н., BSN, Кэтрин Обринба, MD, Кэти Бринд’Амур, MS, Кэти Томас, APR, Катрина Холл, MA, CCLS, Катрина Руге, LPCC-SKatya Harfmann, MDKayla Zimpfer, PCC, Келли Свуп, Келли, Дилвер, PT, DP, Келли, Абра, Келли, Дилвер, PT, DPK . Day, CPNP-PCKelly Pack, LISW-SKelly Tanner, PhD, OTR / L, BCPKelly Wesolowski, PsyDKent Williams, MDKevin Bosse, PhDKevin Klingele, MDKim Bjorklund, MDKim Hammersmith, DDS, MPH, MSKimberly Bates, DP , SCSKimberly Van Camp, PT, DPT, SCSKirk SabalkaKris Jatana, MD, FAAPKrista Winner, AuD, CCC-AKristen Armbrust, LISW-SKristen Cannon, MDKristen Martin, OTR / LKristi Roberts, MS MPHKristina Booth, MSNyle Davberts, MSNyle Davberts, CFNP , MDLara McKenzie, PhD, MALaura Brubaker, BSN, RNLaura DattnerLaurel Biever, LPCLauren Durinka, AuDLauren Garbacz, PhDLauren Justice, OTR / L, MOTLauren Madhoun, MS, CCC-DPLauryn, MTLauryn MDLinda Stoverock, DNP, RN NEA-BC Линдси Пьетрушевски, PT, DPTLindsay SchwartzLindsey Vater, PsyDLisa GoldenLisa M.Хамфри, MD Логан Бланкемейер, MA, CCC-SLPLori Grisez PT, DPTLorraine Kelley-QuonLouis Bezold, MDLourdes Hill, LPCC-S Любна Мазин, PharmDLuke Tipple, MS, CSCSLynda Wolfe, PhDLyndsey MillerLynn Rosenthal, MS , Доктор медицинских наук Манмохан К. Камбодж, доктор медицинских наук Марк Левит, доктор медицинских наук Марк П. Михальский, доктор медицинских наук Марсель Дж. Казавант, доктор медицинских наук Марси Джонсон, LISW-SMarco Corridore, доктор медицинских наук Марк Смит, MS RT R (MR), физик ABMP Марни Вагнер, доктор медицины Мэри Энн Абрамс, доктор медицины, магистр здравоохранения Мэри Фристад, доктор философии, ABPP Мэри Кей Шарретт Мэри Шулл, доктор медицины Мэттью Уошам, доктор медицины, магистр здравоохранения Миган Хорн, МА Меган Брандретт, доктор Мэгэн Лиган Меган, OTR Доктор медицинских наук, М.Эд Меган Касс, PT, DP TM Меган Фишер, BSN, RN Meika Eby, MD Мелани Флуеллен, LPCC Мелани Люкен, LISW-SMelissa и Микаэль Макларен Мелисса МакМиллен, CTRS Мелисса Винтерхальтер, MDMeredith Merz Lind, MDMichael T. DPTMitch Ellinger, CPNP-PCMolly Gardner, PhDMonica Ardura, DOMonica EllisMonique Goldschmidt, MDMotao Zhu, MD, MS, PhDMurugu Manickam, MDNancy AuerNancy Cunningham, MD PsyDNancy Wright, BS, RRT, RCP, AE-C, Naomi-C. , LICDC-CS Натали Роуз, BSN, RN Натали Мейтр, доктор медицины, доктор медицинских наук, Общенациональная детская больница, Национальная детская больница, Эксперты по поведенческому здоровью Ниту Бали, доктор медицины, магистр здравоохранения Нехал Парих, DO, MS Николь Майер, OTR / L, MOTNicole Caldwell, MDNicole LSNicole, доктор Николь Демпстер, PhD Пауэлл, PsyD, BCBA-DNina WestNkeiruka Orajiaka, MBBSOliver Adunka, MD, FACSOlivia Stranges, CPNP-PCOlivia Thomas, MDOmar Khalid, MD, FAAP, FACCOnnalisa Nash, CPNP-PCOula KhouryPaige Duly, CTRSParker HouryPaige Duly, CTRSParker HouryPaige Duly, CTRSParker HouryPaige н, доктор философии Патрик С.Уолц, доктор медицины Патрик Куин, BSN, RNПедро Вайследер, доктор медицины Миннечи, доктор медицины Питер Уайт, доктор философии Прити Джагги, доктор медицины Рэйчел Марокко-Занотти, Дорчел Д’Амико, доктор медицины Рэйчел Шрейдер, доктор медицины Рэйчел Д’Амико, доктор медицины Рэйчел Шрейдер, CPNP-ПК CCLSRebecca Lewis, AuD, CCC-ARebecca Romero ShakReggie Ash Jr. Рено Равиндран, MD Ричард Киршнер, MD Ричард Вуд, MD Роберт А. Ковач, MD, Ph.D. Рошель Крауз, CTRSRohan Henry, MD, MSRose Ayross, MDRose Доктор медицины Райан Ингли, ATC, Саманта Боддапати, доктор медицинских наук, Саманта Мэлоун, Сэмми Лебедь, Сандра К.Ким, доктор медицины Сара Бентли, MT-BC Сара Боде, доктор Сара Брейдиган, магистр медицины, AT, ATC Сара Н. Смит, MSN, APRN Сара О’Рурк, MOT, OTR / L, клинический руководитель Сара Шредер, доктор медицины Сара А. Денни, доктор медицины Сара Клайн, CRA, RT (R) Сара Дрисбах, CPN, APN, Сара Гринберг, Сара Хасти, BSN, RNC-NIC Сара Кейм, доктор медицины Сара Майерс, Сара О’Брайен, доктор медицинских наук, Сара Саксбе, Сара Шмидт, доктор медицинских наук, доктор медицинских наук, Сара Скотт, Сара Трейси, доктор медицинских наук, Сара Верли, доктор медицинских наук, Скотт, Великобритания. Ковен, доктор медицины, магистр здравоохранения Скотт Хики, доктор медицинских наук, Шон Эйнг, Шон Роуз, доктор медицины Сет Альперт, доктор медицинских наук, Шана Мур, Массачусетс, магистр наук, CCC-А, Шаннон Рейнхарт, LISW-SS, Шари Ункафер, Шарон Врона, DNP, PNP, PMHSS, Шон Питчер, BS, RD, USAW, Миллс, Скотт, Саймон, Гилс, Саймон Уайтс, Миллс Скотт APRN, MS, CPNP-AC / PC, CPON Стефани Бестер, MDStefanie Hirota, OTR / LStephanie Burkhardt, MPH, CCRCStephanie CannonStephanie Santoro, MDStephanie Vyrostek BSN, RNStephen Herlen, MD Стивен АлленМатсон, доктор медицины Стивен Чичора, доктор медицины Стивен Кафф, Суэллен Шарп, OTR / L, MOT Сьюзан Колас, доктор медицины Сьюзан Крири, доктор медицины Суруп Пинто, доктор медицины Табата Баллард, Таббета Греко, Таби Эванс, Табита Джонс-Макнайт, доктор медицины Тэхагод Мохаммед, доктор медицинских наук, доктор Тамара Янг-Маара MS, RPhТереза ​​Миллер, BA, RRT, RCP, AE-C, CPFT, Томас Поммеринг, ДОТомас Сэвидж, Тиаша Летостак, доктор философии, Тиффани Райан, BCBA Тим Робинсон, Тимоти Крайп, доктор медицины, доктор философии, Трейси Л. Сиск, RN, BSN, MHATracie CDETra, RD, Мехатрейси Роэтра, Л.Д. MATravis Gallagher, ATTrevor MillerTyanna Snider, PsyDTyler Congrove, ATVanessa Shanks, MD, FAAP Венката Рама Джаянти, MDVidu Garg, MDVidya Raman, MDW.Гаррет Хант, доктор медицины Уолтер Самора, доктор медицинских наук Уоррен Д. Ло, доктор медицины Венди Андерсон, доктор медицины Венди Кливленд, Массачусетс, США, LPCC-SW, Уитни Маккормик, CTRS, Уитни Рэглин Биньял, доктор медицины Уильям Коттон, доктор медицинских наук Уильям Дж. Барсон, доктор медицинских наук Уильям Рэй, доктор медицинских наук, Уильям 9080

Отсасывание

Верхние дыхательные пути согревают, очищают и увлажняют воздух, которым мы дышим. Эхолокационная трубка обходит эти механизмы, поэтому воздух, проходящий через трубку, становится более прохладным, сухим и не таким чистым. В ответ на эти изменения организм производит больше слизи.Отсасывание очищает трахеостомическую трубку от слизи и важно для правильного дыхания. Кроме того, секреты, оставшиеся в пробирке, могут стать загрязненными, и может развиться инфекция грудной клетки. Избегайте слишком частого отсасывания, так как это может привести к накоплению большего количества секрета.

Удаление слизи из трахейной трубки без отсасывания

1. Наклонитесь вперед и откашляйтесь. Собирайте слизь из трубки, а не из носа и рта.
2. Впрысните стерильный физиологический раствор (примерно 5 куб. См) в трахеотромическую трубку, чтобы очистить слизь и снова кашлять.
3. Снимите внутреннюю трубку (канюлю).
4. Всасывание.
5. Позвоните в службу 911, если после выполнения всех вышеперечисленных действий дыхание по-прежнему не нормальное.
6. Удалите трубку трахеи целиком и попробуйте вставить запасную трубку.
7. Продолжайте кашлять, закапывать физиологический раствор и отсасывать до тех пор, пока дыхание не станет нормальным или не прибудет помощь.

Когда проводить аспирацию

Отсасывание важно для предотвращения закупорки трубки слизистой пробкой и остановки дыхания пациента.Следует рассмотреть возможность отсасывания

• Каждый раз, когда пациент чувствует или слышит хрипы слизи в трубке или дыхательных путях
• Утром, когда пациент впервые просыпается
• Когда наблюдается учащенное дыхание (тяжело дышит)
• До питание
• Перед выходом на улицу
• Перед сном

Выделения должны быть белыми или прозрачными. Если они начинают менять цвет (например, желтый, коричневый или зеленый), это может быть признаком инфекции.Если изменение цвета сохраняется более трех дней или если сохранить целостность трахеостомической трубки сложно, позвоните в офис хирурга. Если в секрете есть кровь (она может выглядеть скорее розовой, чем красной), вам сначала следует увеличить влажность и отсосать более осторожно. Шведский или искусственный нос (HME), который представляет собой колпачок, который можно прикрепить к трахеостомической трубке, может помочь поддерживать влажность. Колпачок содержит фильтр, предотвращающий попадание частиц в дыхательные пути и поддерживающий влажность пациента.Если поместить пациента в ванную с закрытой дверью и принять душ, влажность сразу же повысится. Если пациент кашляет или у него отсасывается ярко-красная кровяная слизь, или если у пациента поднимается температура, немедленно позвоните своему хирургу.

Как отсасывать

Оборудование
Очистить отсасывающий катетер (убедитесь, что у вас правильный размер)
Дистиллированная или стерильная вода
Физиологический раствор
Отсасывающий аппарат в рабочем состоянии
Отсасывающий патрубок
Емкость для замачивания внутренней канюли (если применимо)
Щетки для трахеостомии (для очистки трахеостомической трубки)
Дополнительная трахеостомическая трубка

1. Вымойте руки.
2. Включите всасывающий агрегат и подсоедините всасывающий патрубок к агрегату.
3. Используйте чистый отсасывающий катетер при отсасывании пациента. Каждый раз, когда отсасывающий катетер будет использоваться повторно, поместите катетер в контейнер с дистиллированной / стерильной водой и выполните отсасывание примерно на 30 секунд, чтобы удалить секреты изнутри. Затем промойте катетер проточной водой в течение нескольких минут, затем погрузите в раствор из одной части уксуса и одной части дистиллированной / стерильной воды на 15 минут.Часто помешивайте раствор. Промойте катетеры в прохладной воде и высушите на воздухе. Дайте катетерам высохнуть в прозрачном контейнере. Не используйте катетеры повторно, если они стали жесткими или треснутыми.
4. Подсоедините катетер к соединительной трубке для аспирации.
5. Положите пациента на спину, подложив под плечи небольшое полотенце / одеяло. Некоторые пациенты могут предпочесть сидячее положение, которое также можно попробовать.
6. Смочите катетер стерильной / дистиллированной водой для смазки и проверки отсасывающего устройства и контура.
7. Удалите внутреннюю канюлю из трахеостомической трубки (если применимо). У пациента может не быть внутренней канюли. В таком случае пропустите этот шаг и перейдите к номеру 8.

   a. Существуют различные типы внутренних канюль, поэтому лицам, осуществляющим уход, необходимо научиться особому способу удаления канюль пациента. Обычно вращение внутренней канюли в определенном направлении позволяет удалить ее.

   б. Будьте осторожны, чтобы случайно не удалить всю трахеостомическую трубку при удалении внутренней канюли.Часто, закрепив одну руку за фланец трахеостомической трубки (шейную пластину), можно предотвратить ее случайное извлечение.

   г. Поместите внутреннюю канюлю в емкость для замачивания (если она одноразовая, выбросьте ее).
   

8. Осторожно введите катетер в трахеостомическую трубку. Позвольте катетеру следовать естественной кривизне трахеостомической трубки. Расстояние до места расположения катетера становится легче определить с опытом. Наименее травматичный метод — предварительно измерить длину трахеостомической трубки, а затем ввести катетер только на эту длину.Например, если длина трахеостомической трубки пациента составляет 4 см, поместите катетер на 4 см в трахеостомическую трубку. Часто бывают случаи, когда этот метод отсасывания (так называемое отсасывание из кончика) не помогает очистить выделения от пациента. В таких ситуациях катетер может потребоваться ввести на несколько мм дальше конца трахеостомической трубки (это называется глубоким отсасыванием). Имея опыт, лица, осуществляющие уход, смогут определить расстояние до трахеостомической трубки без измерения.
9. При извлечении катетера периодически кладите большой палец на всасывающее отверстие (сторона катетера).Не оставляйте катетер в трахеостомической трубке более чем на 5-10 секунд, так как пациент не сможет нормально дышать с установленным катетером.
10. Дайте пациенту оправиться от аспирации и отдышаться. Подождите не менее 10 секунд.
11. Отсосите небольшое количество дистиллированной / стерильной воды с помощью отсасывающего катетера, чтобы удалить остатки мусора / секрета.
12. Вставьте внутреннюю канюлю из дополнительной трахеостомической трубки (если применимо).
13. Выключите отсасывающий аппарат и выбросьте катетер (очистите согласно шагу 3, если он будет использоваться повторно).
14. Очистите внутреннюю канюлю (если применимо).